【检测技术科普】2026-08-02 蛋白免疫印迹(Western Blot)详解——从 Towbin 1979 到 CDC 2014 算法更新

Shaw Fung | | | 医学 | 73 次阅读

【检测技术科普】2026-08-02 蛋白免疫印迹(Western Blot)详解——从 Towbin 1979 到 CDC 2014 算法更新

概述

蛋白免疫印迹(Western Blot,简称 WB),又称免疫印迹(immunoblotting),是分子生物学、生物化学与免疫学中应用最广泛的蛋白分析技术之一。其核心思路是「先用 SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE)按分子量分离蛋白,再把分离后的蛋白电转移到固相膜上,最后用特异性抗体去识别目标蛋白」[1]。技术体系集 SDS-PAGE 的高分辨力与固相免疫测定的高特异性、高灵敏度于一体,是几乎所有研究蛋白表达、翻译后修饰、蛋白-蛋白相互作用论文的「标配实验」[1,2]。

2026 年距离 W. Neal Burnette 在 1981 年首次提出「Western blot」一词已 45 年[1,3]。然而对临床实验室来说,WB 的角色正在发生深刻变化:2014 年 6 月,美国 CDC 在新版《HIV 实验室检测算法》中正式将 HIV-1 Western blot 从「确诊试验」列表中移出[4,5],标志着这一曾经被誉为「HIV 确诊金标准」的技术让位给更快速、更客观的免疫抗原/抗体联合检测与核酸检测。本文将以 NCBI Bookshelf StatPearls 文献[1]、CDC NHANES 实验室操作手册[6]、《Biochem Mol Biol Educ》综述[7]为主要权威依据,系统梳理 WB 的原理、操作、临床应用、报告解读与未来演进。

一、历史沿革:一场「印迹家族」的接力

WB 不是凭空出现的,它脱胎于 1970 年代核酸印迹技术(Southern blot 1975、Northern blot 1977)的成功[1]。

  • 1970 年代初,W. M. Kelley 和 M. J. Bennett 最早将「电泳分离蛋白 + 抗体特异识别」组合,用于检测血清中的病毒抗原,奠定了 WB 雏形[2]。
  • 1979 年,斯坦福大学的 Harry Towbin 等人首次系统描述了「SDS-PAGE 后将蛋白从凝胶转移到硝酸纤维素膜」的电转移方法,最初是为了研究呼吸道病毒[1,2]。这一改造直接借鉴 Southern/Northern blot,是 WB 走向工程化的关键一步。
  • 1981 年,W. Neal Burnette 在《Analytical Biochemistry》发表的论文中,正式把这一方法命名为「Western blotting」,既遵循了「以发明人姓氏命名印迹」的学界传统(Southern→Edwin Southern、Northern→概念名),又凸显其对象为「蛋白」[1,3]。
  • 1990 年代,化学发光(ECL)底物体系上市,将检测灵敏度比传统 DAB 比色法提升 1-2 个数量级,使 WB 真正具备「pg 级」检测能力。
  • 2014 年 6 月,CDC 发布更新版 HIV 实验室检测推荐算法,明确将 HIV-1 Western blot 移出确诊试剂清单,推荐采用 HIV-1/2 抗原抗体联合检测试剂 + HIV-1/2 抗体鉴别试剂 +(必要时)HIV RNA 检测的新三步法[4,5]。
  • 2020 年代至今,WB 与多重荧光二抗、数字成像系统、单细胞微流控芯片深度融合,朝着更高通量、更精确定量、更小样本需求的方向演进[2]。
Western Blot 技术发展史与临床地位演变
Western Blot 技术发展史与临床地位演变

二、基本原理:四个相互锁扣的分子过程

WB 的技术原理建立在四个相互关联的物理化学与分子识别过程之上[1,2]:

  1. 蛋白解聚与分子量分离:十二烷基硫酸钠(SDS)作为阴离子去垢剂,结合蛋白疏水区并破坏其高级结构;β-巯基乙醇作为还原剂,切断二硫键。两者联合作用使蛋白带上均匀负电荷,形成「SDS-蛋白复合物」。在 PAGE 不连续缓冲系统中,这一复合物仅按分子量大小迁移,从而使「分子量 marker」成为精确参照[1]。
  2. 电转印的物理化学:电场驱动带负电的蛋白从凝胶(阴极侧)向阳极侧迁移,依次经过「海绵/滤纸/凝胶/PVDF 或 NC 膜/滤纸/海绵」的三明治结构,吸附到固相膜上。转印缓冲液中通常含 Tris-甘氨酸系统 + 适量甲醇(增强蛋白与膜的疏水结合),常用的湿转/半干转电流 200-400 mA、转印 30-90 min[1]。
  3. 抗原-抗体特异性识别:膜上的蛋白与「一抗」结合。一抗的抗原表位分为两类: - 线性表位:对应变性蛋白(一抗识别的是氨基酸序列片段),可耐受 SDS 变性条件——这是常规 WB 模式; - 构象表位:依赖蛋白三维结构,需用非变性电泳(如 native PAGE)[1,2]。
  4. 酶标二抗信号放大:酶标二抗(常用 HRP-标记,偶联于抗一抗 Fc 段的二抗)与底物反应。化学发光底物(ECL,luminol + H₂O₂ + 增强剂对碘苯酚)在 HRP 催化下氧化鲁米诺,释放 425 nm 波长的光子,增强剂可延长发光时间并使信号强度提升至传统显色法的 100-1000 倍[2]。

一句话总结:「SDS-PAGE 切开蛋白、电转移到膜、一抗绑靶、酶标二抗+底物发光」——四步缺一不可[1]。

蛋白免疫印迹(Western Blot)四步核心原理
蛋白免疫印迹(Western Blot)四步核心原理

三、操作流程(标准路线)

以下流程综合 NCBI Bookshelf StatPearls[1]、CDC NHANES Laboratory Procedure Manual[6] 及《Biochem Mol Biol Educ》综述[7] 等权威来源,描述一篇典型 WB 实验的标准路线:

3.1 样品制备

  • 细胞样品:去培养基后用温 PBS 洗 2-3 次,加冰预冷裂解液(含蛋白酶抑制剂 cocktail),冰上裂解 10-20 min,刮下细胞,超声 100-200 W × 3 s × 2 次,4 ℃ 12000 g 离心 2 min,取上清[7]。
  • 组织样品:心、肝、脾、肾等组织每 50-100 mg 加 1 mL 裂解液(肺组织 100-200 mg/mL),匀浆后同样离心取上清[7]。
  • 蛋白定量:常用 BCA 法或 Bradford 法(Bradford 利用考马斯亮蓝 G-250 与蛋白结合后在 595 nm 处吸光度变化;BCA 利用 Cu²⁺ 被蛋白还原为 Cu⁺ 后与 BCA 螯合剂生成紫色络合物,562 nm 处读数)[1,2]。两者线性范围一般 20-2000 μg/mL。
  • 上样缓冲液(Laemmli buffer):60 mM Tris-HCl pH 6.8 + 20% 甘油 + 2% SDS + 4% β-巯基乙醇 + 0.01% 溴酚蓝——SDS 解聚蛋白、β-巯基乙醇断二硫键、甘油增密便于上样、溴酚蓝作为电泳前沿指示[1]。
  • 变性:98 ℃ 加热 3 min,使蛋白彻底解聚;冷却后上样,或 -80 ℃ 冻存。

3.2 SDS-PAGE 电泳

不连续缓冲系统(Laemmli 系统)由「浓缩胶(stacking gel,pH 6.8,大孔)+ 分离胶(resolving gel,pH 8.8,小孔)」组成[1]。样品在浓缩胶中被压缩成一条窄带,进入分离胶后按分子量大小分开。常用浓度:10% 分离胶适用于 30-80 kDa 蛋白,12-15% 适用于 10-40 kDa 小蛋白。

3.3 转膜(电转移)

经典「湿转」流程[1,7]: 1. 准备转移缓冲液(Tris 5.8 g + 甘氨酸 2.9 g + SDS 0.37 g + 甲醇 200 mL + ddH₂O 定容至 1 L); 2. PVDF 膜先在甲醇中浸泡 5-10 s 激活(NC 膜无需甲醇),再在转移缓冲液中平衡; 3. 按「负极→海绵→滤纸→凝胶→膜→滤纸→海绵→正极」顺序装配三明治,排出气泡; 4. 冰浴下 100 V 恒压转印 60-90 min(小蛋白缩短,大蛋白延长),或 4 ℃ 冷室过夜 30 V 恒压。

3.4 封闭与抗体孵育

  • 封闭:5% 脱脂奶粉或 5% BSA(磷酸化研究必须用 BSA,避免奶粉中的酪蛋白干扰)溶于 TBST,室温 1 h,封闭膜上未被蛋白占据的非特异结合位点[1]。
  • 一抗孵育:按厂家推荐比例稀释(通常 1:500-1:2000),4 ℃ 摇床过夜(12-16 h),TBST 洗膜 3 次 × 5 min。
  • 酶标二抗孵育:HRP-标记二抗(1:5000-1:10000)室温 1 h,TBST 洗膜 3 次 × 5 min[1]。

3.5 信号检测与图像分析

  • ECL 化学发光:将 ECL 工作液(A 液鲁米诺 + B 液过氧化氢)等体积混匀覆盖膜表面,避光反应 1-2 min 后置入数字成像系统(ChemiDoc / ImageQuant)曝光。
  • 定量分析:用 ImageJ / Image Lab 等软件对目标条带做密度分析(densitometry),以「目标蛋白条带灰度 ÷ 内参蛋白(β-actin、GAPDH、α-tubulin 等)条带灰度」的比值进行相对定量[1]。
  • Stripping & Reprobing:同一张膜可用 Stripping buffer(β-巯基乙醇 + SDS)洗脱一抗/二抗后,重新封闭 + 孵育其他抗体,实现「一张膜多种指标」。

四、应用场景:从基础研究到临床检测

WB 在医学中的应用可分为三大类[1]:

4.1 基础研究——验证基因表达

WB 是基因表达研究最常用的「翻译水平验证」手段。qPCR 检测 mRNA 表达上调后,WB 可在蛋白水平确认其产物是否真的增加;CRISPR 敲除细胞系构建后,WB 用于确认靶蛋白是否被敲低;信号通路研究(如 MAPK、PI3K-AKT-mTOR)通过 WB 检测磷酸化蛋白水平(p-ERK、p-AKT)评估通路激活状态[1,2]。

4.2 临床诊断——金标准地位正在转变

历史上,WB 最标志性的临床应用是 HIV-1 确诊试验。1985 年起,美国血库开始用 ELISA 初筛 + WB 复检的策略确认献血员 HIV 感染状态,WB 通过检测血清中针对 HIV 病毒不同抗原(gp160、gp120、gp41、p24、p31、p18 等)的多条带图谱判断阴阳性[4,6]。单一条带(如仅 p24)的「不确定(indeterminate)」结果很常见,需 6 个月后复查[6]。

CDC 2014 年的算法更新[4,5]主要驱动因素有三: 1. WB 操作复杂、判读主观(不同实验室对「阳性条带组合」判读存在差异),且有约 4-15% 的「indeterminate」结果率; 2. WB 结果需 7-14 天,延误治疗时间——中国 CDC 数据显示当时约 25% 的新诊断 HIV/AIDS 病例已是 AIDS 期[4]; 3. 新一代「HIV Ag/Ab 联合检测试剂(4 代 ELISA / 化学发光)」+「HIV-1/2 抗体鉴别试剂」+「HIV RNA」三步法可在 1-3 天内出结果,灵敏度更高、假阳性更低。

当前临床应用已退守至以下场景[1,2]: - 自身免疫性疾病的特异性抗体确认(如系统性红斑狼疮的抗 dsDNA、抗 Sm 抗体谱,部分医院仍以 WB/LINE-BLOT 形式报告); - 神经退行性疾病生物标志物研究(如帕金森病的 α-synuclein 多聚体检测); - 重组治疗蛋白的表达验证(如基因治疗产品 AAV 载体表达蛋白); - HCV、HDV 等其他病原体特异性抗体谱确认(在资源有限地区仍使用)。

⚠️ 重要提示:StatPearls 明确指出「CDC no longer supports the use of the Western blot assay for diagnostic purposes」[1]。国内诊断领域也已全面转向化学发光/PCR,仅少数三甲医院仍保留 WB 作为疑难病例复核工具。

4.3 药物开发与生物制品质量控制

  • 药物靶点验证:候选小分子药物处理细胞后,WB 检测下游通路蛋白及其磷酸化水平变化,验证「靶点-效应」关系;
  • 生物类似药一致性评价:WB 比较候选药与原研药在糖基化、降解片段等方面的差异;
  • AAV 基因治疗制品:WB 用于检测目的基因在患者细胞中的蛋白表达[1,2]。

五、优缺点:为何它仍是「标配」,又是为何在临床诊断中被取代

5.1 优点[1,7]

  1. 同时给出分子量 + 相对表达量 + 翻译后修饰状态——单一实验信息量大;
  2. 高特异性:抗原-抗体结合 + 分子量定位,双重维度降低假阳性;
  3. 半定量能力:配合内参可粗略评估蛋白丰度变化;
  4. 成熟度高:40 多年文献积累、试剂货架丰富、操作标准化。

5.2 缺点与局限[1,2,4]

  1. 「半定量」而非真正定量:线性范围窄(一般一个数量级),需严格控制上样量;
  2. 周期长:从样品制备到出结果通常 1-3 天,无法用于急诊;
  3. 结果主观性强:条带判读依赖肉眼/图像软件判读,不同操作者/不同实验室间重现性差异显著[4];
  4. indeterminate 结果:WB HIV 检测有约 4-15% 不确定结果[6],增加受检者焦虑;
  5. 抗体依赖:商品抗体质量参差不齐,非特异结合导致「高背景」或「杂带」是常见痛点;
  6. 样本量需求较大:通常需要 10-50 μg 总蛋白,对稀有样本(如临床穿刺活检组织)不友好。

六、报告解读:以 HIV-1 Western Blot 为例

虽然 2014 年后 CDC 已不推荐 WB 作 HIV 确诊试验[4,5],但在全球很多地区(特别是资源有限地区、中国部分基层医院)以及自身免疫病诊断中仍在使用 WB/LINE-BLOT 类报告。报告解读要点[6]:

报告结果 条带特征 临床解读
阳性 出现针对 env(gp160/gp120/gp41)、gag(p24/p18)、pol(p31)的多条带,且至少满足 1 条 env + 1 条 gag/pol(依试剂盒判定标准略不同) 高度提示既往或现症感染,需结合临床与补充试验
阴性 没有任何 HIV 特异性条带(仅可能有非特异性背景) 不能完全排除感染——需结合窗口期、暴露史,必要时 6 个月后复查或做 HIV RNA
不确定(Indeterminate) 仅出现 1 条或多条非特异带(如孤立 p18、p24、p55 等) 低风险人群常因非特异反应(自身抗体、交叉反应)而出现;AIDS 晚期患者常丢失 p24、p31 条带;建议 6 周-6 个月用原标本复查
婴儿特殊情形 18 月龄以下婴儿可能因母体抗体被动转移呈阳性 需 HIV DNA/RNA 核酸检测确认

关键点:[6] **「A negative blot does not exclude the possibility of infection with HIV-1.」阴性结果不能完全排除 HIV 感染。

七、未来展望:从「单条带」到「多重定量 + 单细胞」

WB 自身也在进化[1,2]:

  1. 多重荧光 Western Blot:使用不同波长(488 nm、555 nm、647 nm 等)荧光二抗,可在一张膜上同时检测 2-4 种目标蛋白,免去 Stripping 步骤;
  2. 数字定量 WB(如 ProteinSimple Wes / Jess 系统):「毛细管电泳 + 免疫检测」全自动体系,无需 SDS-PAGE 与转膜,CV < 10%,线性范围扩大至 3-4 个数量级,灵敏度可达 pg 级;
  3. 单细胞 Western Blot(scWestern):在微流控芯片上对单个细胞进行原位 WB,可用于细胞异质性研究(如肿瘤微环境、神经科学干细胞分化);
  4. AI 辅助图像分析:基于深度学习的条带自动识别与定量工具正在被 ImageJ、Image Lab 等软件集成,降低人为判读差异。

参考文献

  1. Zubair M, Launico MV. Western Blot: Principles, Procedures, and Clinical Applications[M]//StatPearls [Internet]. Treasure Island (FL): StatPearls Publishing; 2025 Dec 1. PMID: 31194430. Bookshelf ID: NBK542290. DOI: 10.32388/HZMD9A. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK542290/

  2. 上海陌孚医药科技有限公司. 蛋白免疫印迹(WB)原理与试剂趣谈[EB/OL]. 2026-01-15. https://www.med-life.cn/article/762.html

  3. Burnette WN. Western blotting: electrophoretic transfer of proteins from sodium dodecyl sulfate–polyacrylamide gels to unmodified nitrocellulose and radiographic detection with antibody and radioiodinated protein A[J]. Analytical Biochemistry, 1981, 112(2): 195-203. DOI: 10.1016/0003-2697(81)90281-9.

  4. Pang J, Saksena NK, Xie C, et al. Evaluation of Blood-Based Antibody Rapid Testing for HIV Early Therapy: A Meta-Analysis of the Evidence[J]. Frontiers in Microbiology, 2018, 9: 1455. DOI: 10.3389/fmicb.2018.01455. https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC6036269

  5. Yale School of Medicine, Department of Medicine. New Diagnostic Algorithm for HIV: Farewell Western Blot[R/EB/OL]. New Haven: Yale; 2014. https://medicine.yale.edu/download-file/165c7ce8-af8d-4089-89e8-a360c9597ab5

  6. U.S. Centers for Disease Control and Prevention, National Center for HIV/AIDS, Viral Hepatitis, STD, and TB Prevention, HIV Laboratory Branch. HIV 1 Antibody and Western Blot in Serum: NHANES 2013-2014 Laboratory Procedure Manual[R/OL]. Atlanta: CDC; 2007 (Revised). https://wwwn.cdc.gov/nchs/data/nhanes/public/2013/labmethods/HIV_H_MET_EIA_WB.pdf

  7. Ghosh R, Gilda JE, Gomes AV. The necessity of and strategies for improving confidence in the accuracy of western blots[J]. Biochemistry and Molecular Biology Education, 2014, 42(5): 412-422. DOI: 10.1002/bmb.20823.

  8. U.S. Centers for Disease Control and Prevention (CDC). Provisional Public Health Service inter-agency recommendations for screening donated blood and plasma for antibody to the virus causing acquired immunodeficiency syndrome[J]. MMWR. Morbidity and Mortality Weekly Report, 1985, 34(1): 5-7. https://www.cdc.gov/mmwr/preview/mmwrhtml/00000322.htm

  9. Mahmood T, Yang PC. Western blot: technique, theory, and trouble shooting[J]. North American Journal of Medical Sciences, 2012, 4(9): 429-434. DOI: 10.4103/1947-2714.100998.


本文是检测技术科普,覆盖 WB 原理、操作、临床应用(HIV/自身免疫/药物开发)、优缺点、报告解读与未来演进。供感染科、检验科、临床医学研究人员参考。文中数据已用 NCBI Bookshelf StatPearls、CDC NHANES、Frontiers in Microbiology 等权威来源交叉核验。如有错漏,欢迎指正。


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